蛇肽保健酒及其制备方法

1. 一种蛇肽保健酒，其特征在于由以下体积份数的原料成分组成： 白酒：670〜680份、 蛇毒活性肽溶液：100〜200份、 枸杞子浸泡液：10〜20份、 纯化水：110〜210份； 所述枸杞子浸泡液为枸杞子在白酒中浸泡过滤得到； 所述蛇毒活性肽溶液的制备由以下步骤组成： ① 称取蛇毒蛋白质，用纯化水充分溶解，升温至50°C后保温； ② 按照酶/底物为l〇〇〇〇U/g的比例添加蛋白酶进行酶解，搅拌均匀，于45°C的条件下， 作用6小时，每小时搅拌一次； ③ 将酶解液加热至80°C作用20分钟，冷却至室温； ④ 将灭酶后的酶解液置于离心机中8000转/分钟，离心15分钟，弃去沉淀，得到蛇毒 活性肽溶液。
2. 根据权利要求1所述的蛇肽保健酒，其特征在于所述枸杞子浸泡液的制备方法为： 称取枸杞子，并用白酒进行浸泡，枸杞子与白酒用量的比为〇. lg/ml，浸泡30天后，用板框 过滤机过滤得枸杞子浸泡液。
3. 根据权利要求2所述的蛇肽保健酒，其特征在于：所述蛇毒取自于蝮蛇或/和尖吻 蝮蛇。
4. 根据权利要求3所述的蛇肽保健酒，其特征在于：所述蛇毒取自于蝮蛇毒液和尖吻 蝮蛇毒液，所述蝮蛇毒液与尖吻蝮蛇毒液的添加比例为1:1。
5. -种权利要求1所述的蛇肽保健酒的制备方法，其特征在于包括以下工艺步骤： (1) 制备蛇毒活性肽溶液： ① 称取蛇毒蛋白质，用纯化水充分溶解，升温至50°C后保温； ② 按照酶/底物为l〇〇〇〇U/g的比例添加蛋白酶进行酶解，搅拌均匀，于45°C的条件下， 作用6小时，期间每小时搅拌一次； ③ 将酶解液加热至80°C作用20分钟，冷却至室温； ④ 将灭酶后的酶解液置于离心机中8000转/分钟，离心15分钟，弃去沉淀，得到蛇毒 活性肽溶液； (2) 制备枸杞子浸泡液：称取枸杞子，并用白酒进行浸泡，枸杞子与白酒用量的比为 〇. lg/ml，浸泡30天后，用板框过滤机过滤得枸杞子浸泡液，保存备用； (3) 调配：按体积份数依次将白酒、枸杞子浸泡液、蛇毒活性肽溶液加入到调配罐中混 合均匀，放置5小时后，按体积份数加入纯化水，再充分搅拌混匀； (4) 静置和过滤：静置12小时，依次通过板框过滤机和10微米膜式过滤器进行过滤， 得到精滤液即为蛇肽保健酒。
6. 根据权利要求5所述的蛇肽保健酒的制备方法，其特征在于还包括步骤（5)灌装筛 选：灌装前将白酒瓶用洗瓶机清洗，内外壁至少冲洗2次，水压为0. 10〜0. 15Mpa，再用酒 精消毒，晾干，瓶盖用水浸泡，再冲洗，用75 %酒精消毒，晾干，然后将精滤液用自动灌装机 灌装于白酒瓶中；将灌装后的白酒瓶于照度不低于300Lx的灯箱前筛选出酒体浑浊，或有 悬浮物及肉眼可见杂质的不合格蛇肽保健酒，然后将合格蛇肽保健酒进行包装检验入库。
7. 根据权利要求5所述的蛇肽保健酒的制备方法，其特征在于：所述蛇毒取自于蝮蛇 或/和尖吻蝮蛇。
8. 根据权利要求7所述的蛇肽保健酒的制备方法，其特征在于：所述蛇毒取自于蝮蛇 毒液和尖吻蝮蛇毒液，其中蝮蛇毒液与尖吻蝮蛇毒液的添加比例为1:1。

蛇肽保健酒及其制备方法\n技术领域\n[0001] 本发明属于保健酒技术领域，具体的说，涉及一种蛇肽保健酒及其制备方法。\n背景技术\n[0002] 随着现代生活节奏的加快，社会竞争的加剧，疲劳以及由此引起的免疫力低下成 为困扰很多人的健康问题。加之我国老龄老人的快速增长，导致老年人口总体健康水平下 降，老年慢性非传染性疾病不断增加。因此，开发出适合这类人群长期使用的保健品具有广 阔的市场前景。\n[0003] 蛇作为一种药食同源的动物，从古至今都受到人们相当的重视。研究表明，蛇体、 蛇体酶解功能多肽以及蛇毒均具有缓解体力疲劳的功效。在民间，以蛇泡酒在我国已有悠 久的历史。用蛇酒治病，早在西周时期，我国劳动人民就开始饮用，数千年来，祖国医学在蛇 酒方面积累了宝贵的经验。随着人民生活水平的不断提高，蛇酒越来越受到人们的重视和 欢迎。\n[0004] 目前，我国批准生产的蛇类保健酒产品，使用的蛇体主要是蝮蛇、尖吻蝮、眼镜蛇、 银环蛇、乌梢蛇等，其中有以全蛇为原料，添加各种各样的中药材浸泡而成，其配方五花八 门，其产品功效模糊而不确切，其成分复杂，其功效成分往往标为中药材的苷类物质，而且 并未提及蛇体组分，因而更不能说明其产品起功效作用的是蛇体或其组分；也有直接以蛇 毒液为原料，添加各种药材通过白酒浸泡得到，但这种方式蛇毒毒性较大，虽然加工过程 中，酒精和加热等方式会降低毒液毒性，但其使用的安全性仍然很低；不管以全蛇或蛇毒为 原料，其有效成分的吸收率都很低。\n[0005] 现有技术缺点：现有蛇类保健酒有效成分的吸收率低，使用安全性低，对蛇的宰杀 量大，保健酒生产成本高。\n发明内容\n[0006] 为解决以上技术问题，本发明的目的在于提供一种有效成分吸收率高、使用安全、 保健酒生产成本相对较低的蛇肽保健酒及其制备方法。\n[0007] 本发明的目的是这样实现的：一种蛇肽保健酒，其关键在于由以下体积份数的原 料成分组成：\n[0008] 白酒：670 〜680 份、\n[0009] 蛇毒活性肽溶液：100〜200份、\n[0010] 枸杞子浸泡液：10〜20份、\n[0011] 纯化水：110〜210份；\n[0012] 所述枸杞子浸泡液为枸杞子在白酒中浸泡过滤得到。\n[0013] 上述蛇毒活性肽溶液的制备由以下步骤组成：\n[0014] ①称取蛇毒蛋白质，用纯化水充分溶解，升温至50°C后保温；\n[0015] ②按照酶/底物为l〇〇〇〇U/g的比例添加蛋白酶进行酶解，搅拌均匀，于45°C的条 件下，作用6小时，每小时搅拌一次；\n[0016] ③将酶解液加热至80°C作用20分钟，冷却至室温；\n[0017] ④将灭酶后的酶解液置于离心机中8000转/分钟，离心15分钟，弃去沉淀，得到 蛇毒活性肽溶液。\n[0018] 上述枸杞子浸泡液的制备方法为：称取枸杞子，并用白酒进行浸泡，枸杞子与白酒 用量的比为0. lg/ml，浸泡30天后，用板框过滤机过滤得枸杞子浸泡液。\n[0019] 上述蛇毒取自于蝮蛇或/和尖吻蝮蛇。\n[0020] 上述蛇毒取自于蝮蛇毒液和尖吻蝮蛇毒液，所述蝮蛇毒液与尖吻蝮蛇毒液的添加 比例为1:1。\n[0021] 一种蛇肽保健酒的制备方法，其关键在于包括以下工艺步骤：\n[0022] ( 1)制备蛇毒活性肽溶液：\n[0023] ①称取蛇毒蛋白质，用纯化水充分溶解，升温至50°C后保温；\n[0024] ②按照酶/底物为10000U/g的比例添加蛋白酶进行酶解，搅拌均匀，于45°C的条 件下，作用6小时，期间每小时搅拌一次；\n[0025] ③将酶解液加热至80°C作用20分钟，冷却至室温；\n[0026] ④将灭酶后的酶解液置于离心机中8000转/分钟，离心15分钟，弃去沉淀，得到 蛇毒活性肽溶液；\n[0027] (2)制备枸杞子浸泡液：称取枸杞子，并用白酒进行浸泡，枸杞子与白酒用量的比 为0. lg/ml，浸泡30天后，用板框过滤机过滤得枸杞子浸泡液，保存备用；\n[0028] (3)调配：按体积份数依次将白酒、枸杞子浸泡液、蛇毒活性肽溶液加入到调配罐 中混合均匀，放置5小时后，按体积份数加入纯化水，再充分搅拌混匀；\n[0029] (4)静置和过滤：静置12小时，依次通过板框过滤机和10微米膜式过滤器进行过 滤，得到精滤液即为蛇肽保健酒。\n[0030] 上述的蛇肽保健酒的制备方法，还包括步骤（5)灌装筛选：灌装前将白酒瓶用洗 瓶机清洗，内外壁至少冲洗2次,水压为0. 10〜0. 15Mpa,再用酒精消毒，晾干，瓶盖用水浸 泡，在冲洗，用75%酒精消毒，晾干，然后将精滤液用自动灌装机灌装于白酒瓶中；将灌装后 的白酒瓶与照度不低于300Lx的灯箱前筛选出酒体浑浊，或有悬浮物及肉眼可见杂质的不 合格蛇肽保健酒，然后将合格蛇肽保健酒进行包装检验入库。\n[0031] 上述蛇毒取自于蝮蛇或/和尖吻蝮蛇。\n[0032] 上述蛇毒取自于蝮蛇毒液和尖吻蝮蛇毒液，其中蝮蛇毒液与尖吻蝮蛇毒液的添加 比例为1:1。\n[0033] -、蛇肽保健酒各种指标参数：\n[0034] 1、蛇肽保健酒的感官指标：量取30ml样品，倒入50ml清洁干燥无色玻璃杯中，在 自然光线下用肉眼观察其色泽及性状，用鼻嗅其气味，用口尝滋味，达到表1所示：\n[0035] 表1感官要求\n[0036]\n[0037] 2、理化指标：本发明蛇肽保健酒的理化指标如表2所示：\n[0038] 表2理化指标\n[0039]\n[0041] 3、微生物指标要求：本发明蛇肽保健酒的微生物指标如表3所示：\n[0042] 表3微生物指标\n[0043]\n[0044] 二、对蛇肽保健酒进行安全性检测及结果：\n[0045] 1、急性毒性试验\n[0046] 方法及结果：蛇肽保健酒200ml/kg. bw剂量经口给予雌、雄SD大鼠服用后，观察并 记录SD大鼠的中毒症状或不良反应，两周试验结束后剖杀全部动物，内脏器官未见明显异 常改变，说明本发明蛇肽保健酒对雌、雄性SD大鼠的急性经口 MTD大于200ml/kg. bw，属无 毒类，结果见表4:\n[0047] 表4蛇肽保健酒对SD大鼠的畸形经口毒性试验结果\n[0048]\n[0049] 2、遗传毒性试验\n[0050] 2. lAmes 试验\n[0051] 进行Ames试验，结果见表5和表6,结果显示：物料加与不加 S9的试验，自发对照 组的每皿平均回变菌落数均在正常值范围内，而阳性对照组诱发的每皿平均回变菌落数均 为自发对照组二倍以上，呈明显阳性反应；各试验组的评价回变菌落数均为超过溶剂对照 组的一倍，呈阴性反应，说明本发明蛇肽保健酒无诱导试验菌株回复突变的作用。\n[0052] 表5蛇肽保健酒Ames试验结果(第一次）（个/皿）\n[0053]\n[0054] 表6蛇肽保健酒Ames试验结果(第二次）（个/皿）\n[0055]\n[0056] 2. 2小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验\n[0057] 本发明蛇肽保健酒在小鼠骨髓细胞微核试验中为阴性结果，结果见表7,结果显 示：阳性对照组雌雄动物的微核率均显著高于阴性对照组（P < 〇. 01)，受试物各组的微核 率与阴性对照组比较均无显著性差异（P > 〇. 05)。\n[0058] 表7蛇肽保健酒对小鼠骨髓细胞微核发生率的影响\n[0059]\n[0061] 注：与阴性对照比较# :P〈0. 01\n[0062] 2. 3小鼠精子畸形试验\n[0063] 进行小鼠精子畸形试验，本发明蛇肽保健酒在小鼠畸形试验中为阴性结果，结果 见表8,结果显示：阳性对照组的精子畸形率显著高于阴性对照组（P < 0. 01)，各剂量组的 精子畸形率与阴性对照组比较均无显著性差异（P > 0. 05)。\n[0064] 表8蛇肽保健酒对小鼠精子畸形试验结果\n[0065]\n[0066] 注：与阴性对照比较# :P〈0. 01 ;Λ包括双头，双尾，胖头等。\n[0067] 2. 4大鼠30天喂养试验\n[0068] 阴性对照组和三个剂量组动物在30天喂养期间，摄食、饮水、大小便正常，生长发 育情况和一般表现良好，未观察到明显行为改变和中毒表现。\n[0069] 2. 4. 1对体重和食物利用率的影响\n[0070] 各实验组在整个实验期间的大鼠体重、雌雄大鼠食物利用率的测定结果分别如表 9和表10所示，受试动物雄鼠高剂量组动物第2周摄食轻度增加 （Ρ < 0. 05)，雌书基酒组 动物第3轴摄食轻度降低（Ρ < 0. 05)，但雌雄动物总食物利用与对照组比较无显著性差异 (Ρ > 0. 05)，说明本发明蛇肽保健酒对机体生长发育无不良影响。\n[0071] 表9蛇肽保健酒对大鼠体重的影响G±.v )结果\n[0072]\n[0073] 表10蛇肽保健酒对大鼠食物利用率的影响结果\n[0074]\n[0075]\n[0076] 注：与阴性对照比较* :p〈0. 05。\n[0077] 2. 4. 2脏器系数测定结果：\n[0078] 蛇肽保健酒各剂量组的重要脏器的重量和脏器系数测定结果如表11所示并得 出：雌鼠高剂量组脾脏湿重较对照组高（P <〇.〇5)，其余雌雄鼠各剂量组重要脏器的重量 和脏器系数与阴性对照组比较均无显著性差异（P > 0. 05)。\n[0079] 表11蛇肽保健酒对大鼠脏器重量和系数的影响结果（11=10, (ϊ±.0)\n[0080]\n[0081] 注：与阴性对照比较* :ρ〈0· 05。\n[0082] 2. 4. 3末期血液学检验结果：\n[0083] 试验末期的常规血液学指标(红细胞、血红蛋白、白细胞及分类）测定结果如表12 所示并得出：雄鼠基酒组合低剂量组动物RBC轻度降低（Ρ < 0. 05)，雌鼠三个剂量组RBC均 较对照组轻度升高（Ρ < 0. 05)，其余指标与阴性对照组比较均无显著性差异。\n[0084] 表12蛇肽保健酒对大鼠血液学指标的影响结果\n[0085]\n[0086] 注1 :RBC为红细胞，Hb为血红细胞，WBC为白细胞，GR为中性粒细胞，LY为淋巴细 胞；注2 :与阴性对照对比较，P < 0. 05。\n[0087] 2. 4. 4末期生化指标检测结果：\n[0088] 各实验组血清生化指标如表13所示并得出：雌鼠中剂量组Cr较对照组降低（P <0.05)，无生物学意义，其余指标雌雄鼠各剂量组与阴性对照组比较均无显著性差异（P > 0· 05)。\n[0089] 表13蛇肽酒对大鼠血清生化指标的影响（X土 s，n=10)结果\n[0090]\n[0091] 注1 :ALT为谷丙转氨酶，AST为谷草转氨酶，TP为总蛋白，ALB为白蛋白，BUN为尿 素氮，CR为肌酐，GLU为血糖，CH0为胆固醇，TG为甘油三酯；\n[0092] 注2 :与阴性对照比较，Ρ〈0· 05。\n[0093] 2. 4. 5组织学检测结果：试验结束是对肝、肾、胃、脾脏和空肠进行检查和组织病 理学检查；结果分别如表14、15、16、17、18所示。\n[0094] 表14蛇肽保健酒大鼠 30天喂养实验肝脏组织学观察结果\n[0095]\n[0096] 表15蛇肽保健酒酒大鼠30天喂养实验肾组织学观察\n[0097]\n[0098] 表16蛇肽保健酒对大鼠30天喂养试验胃组织学观察\n[0099]\n[0100] 表17蛇肽保健酒对大鼠30天喂养试验脾的组织学观察\n[0101]\n[0102] 表18蛇肽保健酒对大鼠30天喂养试验空肠组织学观察\n[0103]\n[0104] 结果显示：空白对照组合高剂量组肾脏间质性肾炎各1例，发生率均为5%，但基酒 组肾脏间质性肾炎例数较多，共有5例，发生率占25% ;肝轻度脂肪变性；空白对照组和高剂 量组各1例属动物的自发病变，基酒组表现表面基酒对肾有轻度损害作用。\n[0105] 综上所述，本发明蛇肽保健酒各剂量组对动物脏器均未见由其引起的损害性改 变。\n[0106] 三、功效检测及其结果\n[0107] 1、蛇肽保健酒对于缓解体力疲劳功效测定：采用SPF级雄性ICR小鼠60只，体重 18〜22g，由重庆滕鑫生物技术有限公司提供。蛇肽保健酒按人体推荐剂量的10、20、30倍 剂量，将60只小白鼠随机分为6组，每组10只，即蛇肽保健酒低剂量组(蛇肽保健酒8. 3ml/ kg)、中剂量组(蛇肽保健酒16. 6ml/kg)、高剂量组(蛇肽保健酒33. 2ml/kg)，阳性对照组 (红景天苷180mg · kg · d) E83,基酒对照组（15%酒基)，阴性对照组(蒸馏水)，连续灌胃30 天，测定小鼠负重游泳时间，血乳酸和血尿素氮，结果分别如表19、20、21所示：\n[0108] (1)从表19可见，3种剂量组的蛇肽保健酒组小鼠的游泳时间均高于阴性对照组 及基酒对照组，且中、高剂量组差异明显（P〈〇. 05)，表明游泳时间对蛇肽保健酒具有浓度依 赖性；高剂量组小鼠力竭游泳时间与阳性对照组接近。\n[0109] 表19蛇肽保健酒对小鼠负重游泳时间的影响（)\n[0110]\n[0111]\n[0112] 注：与酒基对照组比较，* :P < 0. 05 ;与阴性对照组比较，# :P < 0. 05。\n[0113] (2)从表20可见，低、中剂量蛇肽保健酒组的小鼠明显低于基酒对照组和阴性对 照组（P〈0. 05)，而高剂量蛇肽保健酒组与基酒对照组、阴性对照组比较差异有显著统计学 意义（P < 0.01)。\n[0114] 表20蛇肽保健酒对游泳后小鼠血乳酸（LA)含量的影响（ϊ±ί )\n[0115]\n[0116] 注：与酒基对照组比较，* :P < 0. 05 ;与阴性对照组比较，# :P < 0. 05 ;与基酒对 照组及阴性对照组比较，** :P < 〇. 01。\n[0117] (3)从表21可见，蛇肽保健酒组小鼠的BUN含量随剂量的增加而逐渐降低，且中、 高剂量组与阴性对照组及基酒对照组比较差异有显著统计学意义（P〈〇. 05)。\n[0118] 表21蛇肽保健酒对力竭游泳后小鼠血尿素氮（BUN)含量的影响（)\n[0119]\n[0120] 注：与酒基对照组比较，* :P < 0. 05 ;与阴性对照组比较，# :P < 0. 01。\n[0121] (4)综上所述：蛇肽保健酒具有明显延长小鼠一次性力竭游泳时间，血乳酸水平及 BUN的含量明显低于基酒对照组及阴性对照组，说明蛇肽保健酒可以通过减少运动中乳酸 的生成，减少运动时蛋白质的分解代谢，减少血清尿素氮的生成，同时降低代谢产生的氨毒 性作用，使小鼠更能适应高强度的运动，达到延缓疲劳产生的效果。\n[0122] 2、蛇肽保健酒对于缓解关节炎功效测定：\n[0123] 以佐剂性关节炎（adjunctive arthritis, AA)小鼠为模型，选取健康雄性成年 小鼠60只，体重20±2g，将60只小鼠随机分为6组，即对照组、模型组、酒基组、蛇肽低剂 量组和高剂量组、阳性对照组，每组101只。除对照组注射生理盐水外，在其他各组小鼠 右后足跖皮内注射弗氏完全佐剂（FCA)0.02mL诱导炎症发生，得到模型：佐剂性关节炎 (adjunctive arthritis, AA)小鼠。造模成功后第2天至34天，开始对小鼠进行灌胃，每 只小鼠每天1次，每次〇. 2mL。阳性对照组以lmg/kg地塞米松进行灌胃，酒基组按10mL/kg 灌胃，蛇肽保健酒组分别按8. 3mL/kg (低剂量)、33. 2mL/kg (高剂量)灌胃，对照组和模型组 用纯净水对小鼠进行灌胃。然后对AA小鼠足趾肿胀度、踝关节、体重和CIC的测定。\n[0124] (1)AA小鼠足趾和踝关节肿胀度的测定\n[0125] 在造模后第2、10、18、26、34天用电子游标卡尺测定各组小鼠右后肢足趾和踝关 节直径。结果如表22和23所示：\n[0126] 表22蛇肽保健酒对AA小鼠右后足趾肿胀度的影响（mm, ，n=10)\n[0128] 其中a :P < 0. 05, b :P < 0. 01，与模型组比较；c :P < 0. 01，与对照组比较。\n[0129] 表23蛇肽保健酒对AA小鼠后踝关节肿胀度的影响（mm，；c土s，n=10)\n[0130]\n[0131] 其中a :P < 0. 05, b :P < 0. 01，与模型组比较；c :P < 0. 01，与对照组比较。\n[0132] 由表22可见，从造模后第2天开始，其他各组小鼠后足趾肿胀度显著高于对照组 (P < 0. 01)。与模型组比较，从给药后第17天即造模后第18天开始，阳性对照组小鼠足趾 肿胀明显降低（P < 0. 05);从造模后第26天开始，蛇肽低剂量组小鼠足趾肿胀度显著降低 (P < 0. 01);酒基组与蛇肽高剂量组均无显著变化。\n[0133] 由表23可见，从造模后第2天开始，其他各组小鼠右后踝关节肿胀度显著高于对 照组（P < 0. 01)。在造模后第18天，阳性对照组小鼠踝关节肿胀度显著降低（P < 0. 05); 造模后第26天，蛇肽低剂量组、蛇肽高剂量组、酒基组和阳性对照组小鼠踝关节肿胀度均 显著降低（P < 〇. 05);造模后第34天，阳性对照组、蛇肽高剂量组小鼠踝关节肿胀度均显 著降低（P < 0.05)，蛇肽低剂量组和酒基组小鼠踝关节肿胀度降低，差异有统计学意义（P < 0· 01)。\n[0134] (2)小鼠体质量和脾脏指数的测定\n[0135] 在造模后第2、10、18、26、34天分别称量小鼠体质量。于末次给药24 h后，称量体 质量，结果如表24所示：\n[0136] 表24蛇肽保健酒对AA小鼠体质量的影响('mm，λ:士s，n=10)\n[0137]\n[0138] 其中a :P < 0. 05,与阳性对照组比较。\n[0139] 由表24可见，从造模第18天开始，与对照组比较，阳性对照组体质量增加缓慢，但 未呈现显著性差异；但蛇肽低剂量组差异有统计学意义（P < 〇. 05)，第26天和第34天时， 阳性对照组与蛇肽低剂量组比较，差异有统计学意义（P < 0. 05)。\n[0140] (3)CIC 的测定\n[0141] 造模后第34天，小鼠眼球取血，离心（3000r / min, lOmin)分离血清，血清用2倍 体积0. lmol/L硼酸缓冲液（pH = 8. 4)稀释备用。测定管与对照管各加稀释血清30 μ L，测 定管加入4. 1%聚乙二醇溶液300 μ L，对照管加入上述硼酸缓冲液300 μ L，混匀后4°C放置 lh。用酶标仪以495nm波长测定各管吸光度（A)值，检测结果表示为测定管A495nm-对照 管 495nm。\n[0142] 结果：造模后第34天，测定各组小鼠血清CIC指数，结果显示模型组 (2. 38±1· 22)小鼠血清CIC指数显著高于对照组（0· 52±0· 10) (P < 0· 05);与模型组相 t匕，蛇肽低剂量组（0. 65±0. 14)和阳性对照组（0. 37±0. 09)的小鼠血CIC指数均显著降低 (P < 0· 05)。\n[0143] 通过结果发现：仅蛇肽保健酒低剂量组与阳性对照组小鼠 CIC显著降低，并恢复 为正常水平。\n[0144] (4)综上所述，低剂量蛇肽酒与地塞米松均对AA小鼠佐剂性关节炎具有显著的治 疗效果，但低剂量蛇肽酒治疗效果更好，且未见不良反应。\n[0145] 有益效果：\n[0146] 本发明一种鱼腥草烫伤喷膜剂及其制备方法，方法简单方便，制备得到的蛇肽保 健酒吸收快、安全，不用宰杀毒蛇以获得蛇毒，生产成本低，还能有效的缓解疲劳和关节炎。\n具体实施方式\n[0147] 下面结合实施例对本发明作进一步说明：\n[0148] 实施例1 : 一种蛇肽保健酒，其特征在于由以下体积份数的原料成分组成：\n[0149] 白酒：680ml、\n[0150] 蛇毒活性肽溶液：200ml、\n[0151] 枸杞子浸泡液：10ml、\n[0152] 纯化水：110ml。\n[0153] -种蛇肽保健酒的制备方法，包括以下工艺步骤：\n[0154] ( 1)制备蛇毒活性肽溶液：\n[0155] ①称取蝮蛇蛇毒蛋白质800g,用200ml的纯化水充分溶解,升温至50°C后保温；\n[0156] ②按照酶/底物为10000U/g的比例添加蛋白酶进行酶解，搅拌均匀，于45°C的条 件下，作用6小时，期间每小时搅拌一次；\n[0157] ③将酶解液加热至80°C作用20分钟，冷却至室温；\n[0158] ④将灭酶后的酶解液置于离心机中8000转/分钟，离心15分钟，弃去沉淀，得到 蝮蛇蛇毒活性肽溶液，保存备用；\n[0159] (2)制备枸杞子浸泡液：称取枸杞子，并用52%的浓香型白酒进行浸泡，枸杞子与 白酒用量的比为〇. lg/ml，浸泡30天后，用板框过滤机过滤得枸杞子浸泡液，保存备用；\n[0160] (3)调配：依次将白酒680ml、枸杞子浸泡液10ml、蝮蛇蛇毒活性肽溶液200ml加 入到调配罐中混合均匀，放置5小时后，加入110ml纯化水，再充分搅拌混匀；\n[0161] (4)静置和过滤：静置12小时，依次通过板框过滤机和10微米膜式过滤器进行过 滤，得到精滤液即为蛇肽保健酒；\n[0162] (5)灌装筛选：灌装前将白酒瓶用洗瓶机清洗，内外壁冲洗4次，水压为0. 10〜 0. 15Mpa，再用酒精消毒，晾干，瓶盖用水浸泡，在冲洗，用75%酒精消毒，晾干，然后将精滤 液用自动灌装机灌装于白酒瓶中；将灌装后的白酒瓶与照度不低于300Lx的灯箱前筛选出 酒体浑浊，或有悬浮物及肉眼可见杂质的不合格蛇肽保健酒，然后将合格蛇肽保健酒进行 包装检验入库。\n[0163] 实施例2 : -种蛇肽保健酒，其特征在于由以下体积份数的原料成分组成：\n[0164] 白酒：670ml、\n[0165] 蛇毒活性肽溶液：100ml、\n[0166] 枸杞子浸泡液：20ml、\n[0167] 纯化水：210ml ;\n[0168] 一种蛇肽保健酒的制备方法，包括以下工艺步骤：\n[0169] ( 1)制备蛇毒活性肽溶液：\n[0170] ①称取尖吻蝮蛇蛇毒蛋白质400g，用100ml的纯化水充分溶解，升温至50°C后保 温；\n[0171] ②按照酶/底物为l〇〇〇〇U/g的比例添加蛋白酶进行酶解，搅拌均匀，于45°C的条 件下，作用6小时，期间每小时搅拌一次；\n[0172] ③将酶解液加热至80°C作用20分钟，冷却至室温；\n[0173] ④将灭酶后的酶解液置于离心机中8000转/分钟，离心15分钟，弃去沉淀，得到 尖吻蝮蛇蛇毒活性肽溶液，保存备用；\n[0174] (2)制备枸杞子浸泡液：称取枸杞子，并用52%的浓香型白酒进行浸泡，枸杞子与 白酒用量的比为〇. lg/ml，浸泡30天后，用板框过滤机过滤得枸杞子浸泡液，保存备用；\n[0175] (3)调配：依次将白酒670ml、枸杞子浸泡液20ml、尖吻蝮蛇蛇毒活性肽溶液100ml 加入到调配罐中混合均匀，放置5小时后，加入210ml纯化水，再充分搅拌混匀；\n[0176] (4)静置和过滤：静置12小时，依次通过板框过滤机和10微米膜式过滤器进行过 滤，得到精滤液即为蛇肽保健酒；\n[0177] (5)灌装筛选：灌装前将白酒瓶用洗瓶机清洗，内外壁冲洗2次，水压为0. 10〜 0. 15Mpa，再用酒精消毒，晾干，瓶盖用水浸泡，在冲洗，用75%酒精消毒，晾干，然后将精滤 液用自动灌装机灌装于白酒瓶中；将灌装后的白酒瓶与照度不低于300Lx的灯箱前筛选出 酒体浑浊，或有悬浮物及肉眼可见杂质的不合格蛇肽保健酒，然后将合格蛇肽保健酒进行 包装检验入库。\n[0178] 实施例3 : -种蛇肽保健酒，其特征在于由以下体积份数的原料成分组成：\n[0179] 白酒：675ml、\n[0180] 蛇毒活性肽溶液：150ml、\n[0181] 枸杞子浸泡液：15ml、\n[0182] 纯化水：160ml。\n[0183] 一种蛇肽保健酒的制备方法，包括以下工艺步骤：\n[0184] ( 1)制备蛇毒活性肽溶液：\n[0185] ①称取蝮蛇蛇毒蛋白质和尖吻蝮蛇蛇毒蛋白质各400g，混合后用200ml的纯化水 充分溶解，升温至50°C后保温；\n[0186] ②按照酶/底物为10000U/g的比例添加蛋白酶进行酶解，搅拌均匀，于45°C的条 件下，作用6小时，期间每小时搅拌一次；\n[0187] ③将酶解液加热至80°C作用20分钟，冷却至室温；\n[0188] ④将灭酶后的酶解液置于离心机中8000转/分钟，离心15分钟，弃去沉淀，得到 蛇毒活性肽溶液；\n[0189] (2)制备枸杞子浸泡液：称取枸杞子，并用52%的浓香型白酒进行浸泡，枸杞子与 白酒用量的比为〇. lg/ml，浸泡30天后，用板框过滤机过滤得枸杞子浸泡液，保存备用；\n[0191] (3)调配：依次将白酒675ml、枸杞子浸泡液15ml、蛇毒活性肽溶液150ml加入到 调配罐中混合均匀，放置5小时后，加入160ml纯化水，再充分搅拌混匀；\n[0192] (4)静置和过滤：静置12小时，依次通过板框过滤机和10微米膜式过滤器进行过 滤，得到精滤液即为蛇肽保健酒；\n[0193] (5)灌装筛选：灌装前将白酒瓶用洗瓶机清洗，内外壁冲洗3次，水压为0. 10〜 0. 15Mpa，再用酒精消毒，晾干，瓶盖用水浸泡，在冲洗，用75%酒精消毒，晾干，然后将精滤 液用自动灌装机灌装于白酒瓶中；将灌装后的白酒瓶与照度不低于300Lx的灯箱前筛选出 酒体浑浊，或有悬浮物及肉眼可见杂质的不合格蛇肽保健酒，然后将合格蛇肽保健酒进行 包装检验入库。