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专利名称 | 血管生成促进剂 |
申请号 | CN98810630.2 | 申请日期 | 1998-08-24 |
法律状态 | 权利终止 | 申报国家 | 中国 |
公开/公告日 | 2000-12-27 | 公开/公告号 | CN1278177 |
优先权 | 暂无 | 优先权号 | 暂无 |
主分类号 | 暂无 | IPC分类号 | 暂无查看分类表>
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申请人 | 吉富制药株式会社;水岛裕;生化学工业株式会社 | 申请人地址 | 日本大阪府
变更
专利地址、主体等相关变化,请及时变更,防止失效 |
权利人 | 三菱制药株式会社,株式会社LTT生物医药 | 当前权利人 | 三菱制药株式会社,株式会社LTT生物医药 |
发明人 | 江木康阳;久保佳史;木户秀明;西川昌邦;林一孝;井上理 |
代理机构 | 中国专利代理(香港)有限公司 | 代理人 | 曹雯;杨丽琴 |
摘要
以通式(I)所示化合物为有效成分的血管生成促进剂。〔式中R1表示酰基;R2表示烷基;R3、R4相同或不同,表示氢原子或羟基的保护基;R5表示烷基。〕上述化合物不仅其本身在单独使用时具有促进血管生成的作用,而且能够增强b-FGF等具有血管生成作用的药物带来的血管生成作用。因此,在缺血组织及其他病态下在b-FGF局部增加的部位,可以通过其促进血管生成作用进一步发挥作用。
1.通式(I)所示的化合物在制造血管生成促进剂中的用途,
式中,R1表示碳原子数为2-6的酰基,R2表示碳原子数为1-30的烷 基;R3、R4相同或不同,表示氢原子或碳原于数为2~8的酰基或芳烷 基;R5表示碳原子数为1-10的烷基。
2.如权利要求1所述的用途,R1表示碳原子数为2-6的酰基, R2表示碳原子数为1-30的烷基,R3、R4相同或不同,表示氢原子、乙 酰基、丙酰基、苯甲酰基、苯甲基、苯乙基,R5表示碳原子数为1-10 的烷基。
3.如权利要求1所述的用途,R1表示碳原子数为2-4的酰基, R2表示碳原子数为1-4的烷基,R3、R4相同或不同,表示氢原子或碳 原子数为2~8的酰基或芳烷基;R5表示碳原子数为5-7的烷基。
4.如权利要求1所述的用途,R1表示碳原子数为2-4的酰基,R2 表示碳原子数为1-4的烷基,R3、R4相同或不同,表示氢原子、乙酰 基、丙酰基、苯甲酰基、苯甲基、苯乙基,R5表示碳原子数为5-7的 烷基。
5.如权利要求1所述的用途,通式(I)所示的化合物为9-丁酰 氧基-11α,15S-二羟基前列腺-8,13E-二烯-1-羧酸丁酯。
6.如权利要求1所述的用途,该血管生成促进剂是脂肪乳剂的形式。
7.权利要求1所述的化合物在制造对具有血管生成作用的药物能 够增强其作用的增强剂中的用途。
8.如权利要求7所述的用途,具有血管生成作用的药物是生长因 子、肝素、腺苷或潘生丁。
9.如权利要求8所述的用途,生长因子是b-FGF、TGFβ、VEGF、 HGF或EGF。
技术领域\n本发明涉及前列腺腺素E1前体的新用途发明,具体的说是血管生 成的促进剂,及生长因子引起的血管生成作用的增强剂。\n 背景技术\n已知前列腺腺素E1(PGE1)类在生物体内微量存在,具有多种生理 作用,但其化学稳定性差。因而,对制剂改进及PGE1修饰的研究一直 在进行,特别是PGE1前体(前体药物)受到了瞩目。本发明的目的在于 提供一种PGE1前体的新用途。\n 发明概述\n本发明人发现特定的PGE1前体具有血管生成的促进作用,另外可 以增强碱性成纤维细胞增殖因子(下面称作“b-FGF”)等生长因子的 血管生成作用,从而完成了本发明。\n也就是说,本发明是以通式(I)所示化合物(下面称作“PGE1前 体”)作为有效成分的血管生成促进剂。另外,本发明是以PGE1前体 作为有效成分,对具有血管生成作用的药物可以增强其作用的增强 剂。\n\n〔式中R1表示酰基,R2表示烷基;R3、R4相同或不同,表示氢原子或 羟基的保护基;R5表示烷基。〕\n通式(I)中R1所示酰基的碳原子数为2~6,优选2~4,合适的物 质例如乙酰基、丙酰基、丁酰基、新戊酰基、己酰基等烷酰基。R2所 示烷基的碳原子数为1~30,优选1~4,可以举出例如甲基、乙基、 丙基、丁基、己基、辛基、癸基、二十烷基、三十烷基等。R5所示烷 基的碳原子数为1~10,优选5~7,可以举出上述烷基中与该碳原子 数对应的物质。R3、R4所示羟基的保护基,例如酰基(乙酰基、丙酰基、 苯甲酰基等)、芳烷基(苯甲基、苯乙基等)等。\n作为通式(I)所示PG E1前体的具体例子,例如9-乙酰氧基- 11α,15S-二羟基前列腺-8,13E-二烯-1-羧酸甲酯,9,11α, 15S-三乙酰氧基前列腺-8,13E-二烯-1-羧酸甲酯,9,15R-二 乙酰氧基-11α-羟基前列腺-8,13E-二烯-1-羧酸甲酯,9,15S -二乙酰氧基-11α-羟基前列腺-8,13E-二烯-1-羧酸甲酯,9 -乙酰氧基-11α,15S-二羟基-17S,20-二甲基前列腺-8,13E -二烯-1-羧酸丁酯,9-乙酰氧基-11α,15S-二羟基前列腺-8, 13E-二烯-1-羧酸丁酯,9-丁酰氧基-11α,15S-二羟基前列腺 -8,13E-二烯-1-羧酸丁酯,9,11α-二乙酰氧基-15S-羟基- 17S,20-二甲基前列腺-8,13E-二烯-1-羧酸丁酯等。\n通式(I)表示的化合物在特开昭58-39660号公报(对应 USP4363817、USP4543421、EP-A-133450)、特开平3-204853号 公报(对应USP5120870、EP-A-423697)、特开平5-213862号公报 (对应USP5194670、EP-A-624574)等中记载了其制备方法。\n该PGE1前体可以制成例如环糊精(CD)夹杂物、脂质体、乙醇溶 液、脂肪乳剂等适当形式的制剂使用。优选脂肪乳剂的形式,这种制 剂的缓释性、持续性、局部蓄积性优良,同时具有良好的保存稳定性。\n以下说明作为优选形式的脂肪乳剂。本发明中,所谓含有PGE1 前体的脂肪乳剂〔以下称作“含有PGE1前体的脂肪乳剂”〕是指含有 PGE1前体,而且油成分作为液滴分散到分散介质中的制剂。\n油成分例如植物油、中链脂肪酸甘油三酯(即MCT)、鱼油等。可 以使用1种,也可以使用2种以上。植物油例如大豆油、芝麻油、蓖 麻油、棉籽油、橄榄油等。这些物质最好采用公知的方法精制到临床 上能够安全使用的程度。优选高纯度的精制大豆油,更优选采用例如 水蒸气蒸馏法对精制大豆油进一步精制得到的高纯度的精制大豆油 (纯度:甘油三酯、甘油二酯及甘油单酯的含量在99.9%以上)。\n为了使油成分在分散介质中分散,可以使用磷脂等作为乳化剂。 磷脂例如卵磷脂、大豆磷脂等,特别优选使用其精制磷脂。这种精制 磷脂可以依照常规方法,采用有机溶剂分离法进行制备。精制磷脂主 要由卵磷脂、磷脂酰乙醇胺组成,此外的磷脂还含有磷脂酰肌醇、磷 脂酰丝氨酸、鞘髓磷脂等。另外,也可以使用实质上从精制磷脂中除 去磷脂酰乙醇胺的物质,具体来说也可以使用除去磷脂酰乙醇胺直至 其含量约1w/w%以下的物质,这可以使用卵黄、大豆等的磷脂,按照 常规方法用有机溶剂分离,然后通过硅胶、矾土等无机吸附剂精制得 到。因此,得到的磷脂主要由卵磷脂组成〔特开昭60-149524号公 报(对应USP4684633、EP-A-150732)〕。而且,也可以使用卵磷脂、 磷脂酰乙醇胺、磷脂酰丝氨酸或磷脂酰肌醇本身。分散剂例如水等, 优选净化水。该含有PGE1前体的脂肪乳剂主要由植物油5-50% (w/v)、相对于植物油100重量份的磷脂1-300重量份(优选5-100 重量份,更优选10-50重量份)及适量水组成。\n另外,本发明中含有PGE1前体的脂肪乳剂除了上述成分以外,必 要时还可以加入乳化辅助剂、防腐剂、稳定剂、高分子物质、等渗剂 等。\n乳化辅助剂例如碳原子数为6-22(优选12-20)的脂肪酸或其 可药用盐,及碳原子数为2-22的脂肪胺等。脂肪酸只要是可以添加 到药品中的物质即可,没有特别的限定,可以是直链状或支链状的, 具体的说优选使用直链的硬脂酸、油酸、亚油酸、棕榈酸、亚麻酸、 肉豆蔻酸等。另外,这些脂肪酸的可药用盐例如碱金属盐(钠盐、钾 盐等)、碱土金属盐(钙盐、镁盐等)等。而且,脂肪胺只要是可以添 加到药品中的物质即可,没有特别的限定,例如直链状或支链状碳原 子数为2-22的伯胺、仲胺等,具体的说例如乙醇胺、丙胺、辛胺、 硬脂酰胺、油酰胺等。该乳化辅助剂的含量优选脂肪酸或其盐在0.3 %(w/v)以下,另外脂肪胺等在0.1%(w/v)以下。\n稳定剂只要是可以添加到药品中的物质即可,没有特别的限定, 例如胆固醇类、磷脂酸等。其含量为胆固醇类优选0.5%(w/v)以下, 更优选0.1%(w/v)以下,另外,磷脂酸优选5%(w/v)以下,更优选1 %(w/v)以下。\n高分子物质只要是可以添加到药品中的物质即可,没有特别的限 定,例如白蛋白、葡聚糖、乙烯基聚合物、非离子表面活性剂、明胶、 羟乙基淀粉等。作为白蛋白,由于抗原性的问题等,可以使用由人体 得到的物质。乙烯基聚合物例如聚乙烯吡咯烷酮等。作为非离子表面 活性剂,可以使用聚亚烷基二醇(例如平均分子量为1000-10000,优 选4000-6000的聚乙二醇等)、聚氧亚烷基共聚物(例如平均分子量 为1000-20000,优选6000-10000的聚氧乙烯-聚氧丙烯共聚物 等)、氢化蓖麻油聚氧亚烷基衍生物〔例如氢化蓖麻油聚氧乙烯-(20) -醚、同前-(40)-醚、同前-(100)醚等〕、蓖麻油聚氧亚烷衍生物 〔例如蓖麻油聚氧乙烯-(20)-醚、同前-(40)-醚、同前-(100) 醚等〕等。其含量为相对于PGE1前体100重量份,优选高分子物质 10-500重量份,更优选50-100重量份。\n等渗剂例如甘油、葡萄糖等。\n上述脂肪乳剂中含有的PGE1前体的量可以随乳剂的形态及用途 适当增减,一般的在该乳剂中含有极微量(例如约0.1-100μg/ml)就 足够了。\n含有PGE1前体的脂肪乳剂特别优选的组成如下所示。\n PGE1前体 1-100μg\n 精制大豆油 50-500mg\n 高度精制卵磷脂 5-50mg\n 油酸 0.1-5mg\n 浓甘油 5-50mg\n 蒸馏水 适量\n 合计 1ml\n含有PGE1前体的脂肪乳剂的制造方法并没有特别限定,可以采用 各种方法制备,基本来说可以通过下述方法制得:向由PGE1前体与其 它油成分组成的油状物中加入作为分散介质的水,特别是纯净水,采 用适当的方法乳化直到成为均质。具体例如下述方法:也就是说,将 一定量的PGE1前体、油成分(优选大豆油)、磷脂以及必要时加入的 其它上述添加剂混合,加热形成溶液,使用常用的匀浆机(例如高压 喷射型匀浆机、超声波型匀浆机等)进行匀质处理,制得油包水型分 散液,然后向其中加入必要量的水,再用上述匀浆机进行匀质化,转 变成水包油型乳剂。根据制造中的情况,也可以在脂肪乳剂制备后, 加入稳定剂、等渗剂等添加剂〔特开昭58-222014号公报(对应 USP4493847、EP-A-97481)〕。\n上述处理之后,也可以进行灭菌·除菌处理。灭菌处理可以采用 常规方法,例如灭菌过滤法、γ射线照射法、高压加热处理法等。\n因此,制得的含有PGE1前体的脂肪乳剂可以直接或根据需要添加 其它成分形成本发明的促进剂。其它成分例如二十碳五烯酸(所谓 EPA)、二十二碳六烯酸(DHA)等。该脂肪乳剂的平均粒径优选1μm 以下,更优选0.2-0.4μm。\n以下对使用该PGE1前体制备脂肪乳剂以外其它形式制剂的场合 进行说明。\n环糊精(CD)夹杂物可以通过下述方法得到:将PGE1前体溶解于 溶剂(乙醇等)中,向该溶液中加入将环糊精加温溶解于水等得到的 溶液后,冷却,过滤析出的沉淀,减压干燥。\n脂质体可以通过下面的方法得到:将磷脂溶解于溶剂(氯仿等) 中,向该溶液中加入在溶剂(乙醇等)中溶解PGE1前体得到的溶液后, 蒸馏除去溶剂,向其中加入磷酸缓冲液,经振荡、超声波处理及离心 分离后,用膜滤器等过滤上清液而得到。\n乙醇溶液可以通过将PGE1前体溶解于乙醇中得到。另外,该乙醇 溶液可以在使用时用生理盐水或葡萄糖溶液稀释。\n另外,上述脂肪乳剂和其它制剂可以采用常规方法调节pH、盐浓 度、渗透压等。另外,必要时也可以制成冷冻干燥制剂。\n本发明的促进剂中PGE1前体不仅具有促进血管生成的作用,而且 可以增强生长因子引起的血管生成作用。\n本发明的血管生成促进剂能够以注射剂等非口服形式给药,特别 优选静脉内给药。这种给药优选PGE1前体1日1-1000μg,可以按 照0.01-1000ng/kg/分的比例1日1次静脉内持续注射给药。\n另外,本发明的血管生成促进剂可以与具有血管生成作用的公知 药物合用,以增强这种作用。这时最好投予本发明的血管生成促进剂 与具有血管生成作用的药物使之同时存在于生物体。两者可以一起制 成制剂,也可以分别制成制剂。分别制成制剂时,给药途径·用法可 以相同也可以不同。\n作为具有血管生成作用的公知药物,例如生长因子(growth factor)、肝素、腺苷、潘生丁等。生长因子例如b-FGF、TGF(转 化生长因子)β、VEGF(血管内皮细胞增殖因子)、HGF(肝细胞生长 因子)、EGF(上皮细胞生长因子)等。它们的用法、用量只要在已知 的范围内即可,并没有特别的限定。\n 图面的简单说明\n图1是表示试验例1中溶剂给药组血管生成结果的照片。图2是 表示试验例1中AS给药组结果的照片。图3是表示试验例2中单独 溶剂给药组(第1组)结果的照片。图4是表示试验例2中b-FGF 给药组(第2组)结果的照片。图5是表示试验例2中AS与b-FGF 并用组(第3组)结果的照片。\n 实施例·试验例\n为了进一步详细说明本发明,列出实施例及试验例,但是本发明 并不只限于此。\n实施例1(CD夹杂物)\n将9-丁酰氧基-11α,15S-二羟基前列腺腺-8,13E-二烯 -1-羧酸丁酯(以下称为“AS”。)17mg溶解于乙醇0.2ml中,再向 该溶液中加入将β-环糊精257mg加温溶解于6ml水制得的溶液,45 ℃下加温溶解后,冷却至室温,使之析出沉淀。将其在0℃下放置一 夜后过滤,用50%的乙醇水溶液洗涤后,减压干燥,得到环糊精(CD) 夹杂物。\n实施例2(脂质体)\n将卵磷脂60mg及油酰胺11mg溶解于氯仿5ml后,加入将AS 30 μg溶解于乙醇100μl中得到的溶液,加入到茄型烧瓶中,用旋转式 蒸发器蒸馏除去溶剂。再向其中加入0.1M的等渗磷酸缓冲液(pH5) 1ml,振荡、超声波处理及离心分离后,用0.2μm的膜滤器过滤上清 液,得到脂质体制剂。\n实施例3(乙醇溶液)\n将AS 500μg溶解于乙醇1ml中,而得到乙醇溶液制剂。使用时, 用生理盐水或葡萄糖溶液等稀释。\n实施例4(脂肪乳剂)\n向精制大豆油30g中加入精制卵磷脂5.4g、AS 1.5mg及油酸 0.72g,40-75℃下加热溶解。向其中加入蒸馏水200ml,然后加入 日本药典甘油7.5g,用20-40℃的注射用蒸馏水加至全量300ml, 用均浆机粗乳化。第1次在120kg/cm2下,合计500kg/cm2的压力下, 通过Manton-Gaulin型匀浆机10次,使其乳化,从而得到匀质且含 有极细微PGE1前体的脂肪乳剂。该乳剂的平均粒径为0.2-0.4μm, 且不含有1μm以上的粒子。\n试验例1\n使用本发明的促进剂,评价其血管生成作用。\n①使用制剂\n作为本发明的促进剂,使用将实施例中4含有AS的脂肪乳剂用 10%脂肪乳剂(Intralipos,由绿十字公司(Green Cross Corporation)生产,另外于1998年4月1日由吉富制药株式会社制 造并出售)稀释得到的物质。作为对照的溶剂给药组只使用上述10% 的脂肪乳剂。\n②使用方法\n将大鼠麻醉,在背部正中线部切开约1cm,在距尾部一侧2.5cm 处用柯赫尔氏灯在皮下制造气包,埋入吸收了生理盐水的止血用明胶 海绵(Spongel,1.0×1.0×0.5cm,山之内制药公司生产),制成大鼠 海绵模型。\n然后将切开部位缝合、消毒后,肌肉注射抗生素,送回饲养笼。 从埋入海绵当天开始至第4天,由尾静脉1日1次快速浓注(ボ一ラ ス)各制剂。埋入第4日,将每组8只动物处死后,切开背部,在不 损坏埋入海绵的前提下,剥离周围组织,拍摄海绵表面的照片。之后, 取出所有海绵,加入0.1M氨水2ml,放置4小时,提取海绵内的血红 蛋白。使用测定试剂盒测定提取液100μl中的血红蛋白含量,计算 出海绵内血红蛋白的含量,作为血管生成的指标。\n③统计处理\n血管生成作用的评价是以溶剂给药组作为对照,采用Dunnett法 进行多重比较检验,讨论显著性。危险率低于5%的认为有显著性差 异。\n④结果\ni)海绵内血红蛋白含量(表1)\n如果连日由静脉快速浓注AS(3μg/kg),与溶剂给药组比较, AS使血红蛋白含量增加,可以认为有显著性差异。\n 表1\n 埋入4日后的 血红蛋白含量(mg/海绵) 溶剂给药组 (1ml/kg) 1.5±0.9 AS给药组 (3μg/kg) 4.4±0.8*\n 表中的数值表示平均±标准误差。\n *P<0.05相对于溶剂给药组(Dunnett法)\nii)照片观测\n溶剂给药组(图1)中能够观察到海绵表面有一些新生血管。AS 给药组(图2)中能够用肉眼观察到显著的血管网,血管生成良好。\niii)总结\n如果投给AS,能够观察到显著的血管网,与溶剂给药组比较,发 现海绵内血红蛋白含量显著增加,因此说明AS能够促进血管生成。\n实验例2\n使用本发明的促进剂,评价对b-FGF引起的血管生成的促进作 用。\n①使用制剂\n与实验例1相同,作为本发明的促进剂,使用将实施例4含有AS 的脂肪乳剂用10%脂肪乳剂(Intralipos,由绿十字公司(Green Cross Corporation)生产,另外于1998年4月1日由吉富制药株式 会社制造并出售)稀释得到的物质。作为对照的溶剂给药组只用上述 10%的脂肪乳剂。\n②实验方法\n使用吸收了含有0.1%BSA(牛血清蛋白)的生理盐水或b-FGF溶 液(用含有0.1%BSA的生理盐水将b-FGF1mg/ml溶液100μl稀释10 倍制得的物质)的止血用明胶海绵,与实验例1同样制成大鼠海绵模 型(每组6-8只)。从海绵埋入当天起至第4天,以1ml/mg的用量由 尾静脉快速浓注溶剂及AS。埋入4天后,与实验例1同样,拍摄海绵 表面的照片,而且计算出海绵内的血红蛋白含量。\n③统计处理\n血管生成作用的评价是以溶剂单独给药组(海绵内含有BSA的生 理盐水+10%脂肪乳剂静脉注射)为对照,采取Dunnett法进行多重 比较检验(第1组对第2,3组),讨论显著性。关于AS与b-FGF的 相互作用,以b-FGF单独给药组为对照,进行非对应t检验(第2组 对第3组),讨论显著性。另外,危险率低于5%的认为有显著性差异。\n④结果\ni)海绵内血红蛋白的含量(表2)\n确认b-FGF单独给药组在埋入4天后,海绵内的血红蛋白含量 增加。另一方面,AS与b-FGF并用组与b-FGF单独给药组相比,显 著使海绵内血红蛋白的含量增加。\n 表2\n 静脉注射 海绵内 埋如4天后海绵内 血红蛋白含量(mg/海绵) 例数 (n) 投给10%脂肪 乳剂 0.1%BSA/生理盐 水(100μl/海绵) 6.5±0.7 第1组 6 (1ml/kg) b-FGF (1μg/kg) 11.8±0.9 第2组 8 投给 AS(3μg/kg) b-FGF (1μg/kg) 20.7±3.1 # 第3组 7\n表中的数值表示平均±标准误差。\n#P<0.05相对于b-FGF单独给药组(非对应t检验)\nii)照片观测\n溶剂单独给药组(第1组)中,只有海绵周围能够观察到血管(图 3)。另外,b-FGF给药组(第2组)中,能够观察到在海绵表面有很多 血管伸展的图象,确认形成了血管网(图4)。另一方面,AS与b-FGF 并用组(第3组)中,可以确认进一步形成了显著的血管网,而且血管 直径也变大了(图5)。\niii)总结\n如果AS与b-FGF并用,能够增强b-FGF的血管生成促进作用。 因而,AS不仅在单独使用时具有促进血管生成的作用,而且由于能够 增强b-FGF的作用,所以在缺血组织及其他病态下在b-FGF局部增 加的部位,通过AS的血管生成促进作用可以进一步发挥作用。\n实验例3(毒性实验)\n即使将实施例4的脂肪乳剂对小鼠、大鼠及狗以PGE1前体 250μg/kg体重的量静脉给药,也没有出现死亡例,没有表现出严重 的毒性。\n 工业实用性\n本发明促进剂有效成分PGE1前体,不仅其本身在单独使用时具有 促进血管生成的作用,而且能够增强b-FGF等具有血管生成作用药 物带来的血管生成作用。因而,在缺血组织及其他病态下b-FGF局 部增加的部位,可以通过其血管生成促进作用进一步发挥作用。\n本申请是以日本平成9年专利申请231110号为基础的,这些内 容也全部包含在本说明书中。
引用专利(该专利引用了哪些专利)
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